D'où viennent les coûts cachés
Dans l'industrie agroalimentaire et de l'alimentation animale, le coût direct d'un laboratoire de contrôle qualité se lit facilement dans un budget : instruments, réactifs, consommables et temps d'analyste. Le coût indirect se paie ailleurs — dans le produit fabriqué pendant qu'un résultat était en attente, dans la marge ajoutée à une formulation pour qu'un résultat tardif reste conforme, et dans les décisions fondées sur un échantillon qui ne représentait pas le lot. La littérature sur la technologie analytique des procédés (PAT) a été écrite pour l'industrie pharmaceutique, mais son argument central s'applique à tout procédé : mesurer pendant la fabrication, et pas seulement après [1][2].
« La qualité ne peut pas être obtenue par des contrôles sur le produit ; elle doit être intégrée ou conçue dès l'origine. » — guide PAT de la FDA [1]
Le délai d'obtention des résultats : mesurer après coup
Le guide de la FDA américaine définit la PAT comme la maîtrise de la fabrication au moyen de mesures en temps utile, effectuées pendant la fabrication, des attributs qualité critiques, et distingue les mesures at-line, on-line et in-line selon que l'échantillon est prélevé du flux de procédé, dérivé de celui-ci ou laissé en place [1]. Les gains qu'il anticipe sont les coûts cachés du modèle de laboratoire pris à rebours : temps de cycle plus courts, moins de rejets, moins de rebuts et de retraitements, meilleure utilisation de l'énergie et des matières [1]. L'ICH Q8(R2) ajoute que la libération en temps réel fondée sur les données du procédé peut remplacer les contrôles sur produit fini, mais pas la revue de lot BPF [2].
Un résultat de laboratoire arrive tard à cause de la chimie des méthodes de référence. La protéine brute par Kjeldahl (ISO 5983-1) exige une minéralisation dans l'acide sulfurique avec du sulfate de potassium et un catalyseur au cuivre à 420 °C, puis une distillation à la vapeur de l'ammoniac dans de l'acide borique et un titrage [3][4]. La matière grasse brute (ISO 6492) est déterminée par extraction au solvant, et les aliments contenant des produits laitiers, du gluten, de la levure, des protéines de soja ou de pomme de terre ou des ingrédients traités thermiquement nécessitent une étape d'hydrolyse avant que l'extraction puisse commencer [5]. Chaque étape consomme des réactifs qu'il faut acheter, manipuler et éliminer, et allonge l'intervalle entre l'échantillonnage et la connaissance de la réponse. L'étude collaborative de la méthode au catalyseur au cuivre a rapporté pour la protéine brute des écarts-types relatifs intralaboratoires de 0,40 % à 2,38 % [4] : c'est la fidélité achetée au prix du délai, et le plancher de toute méthode plus rapide étalonnée par rapport à elle.
L'erreur d'échantillonnage : le coût que personne ne budgète
Un laboratoire analyse quelques grammes ; la décision porte sur des tonnes. La théorie de l'échantillonnage (Theory of Sampling) élaborée par Pierre Gy traite le choix de la prise d'essai comme une source d'erreur à part entière, avec des règles sur la manière d'échantillonner et la quantité à prélever, et avertit qu'il n'existe pas de biais d'échantillonnage constant que l'on pourrait simplement corriger par étalonnage [6]. Petersen, Minkkinen et Esbensen en énoncent clairement la conséquence : l'erreur totale d'échantillonnage domine les résultats analytiques et dépasse souvent de plus de 100 fois l'erreur analytique totale [7]. Esbensen et Paasch-Mortensen appliquent la même théorie aux réacteurs, aux cuves et aux flux de procédé et qualifient l'échantillonnage représentatif de chaînon manquant de la PAT [8]. Pour un échantillon ponctuel prélevé sur un convoyeur, dans une trémie ou dans une citerne, la conséquence pratique est qu'une analyse précise d'un échantillon mal choisi est précise sur la mauvaise chose, et le coût apparaît sous forme de décisions d'acceptation, de rejet ou d'ajustement prises sur un chiffre qui ne décrivait pas le lot.
Surremplissage et surformulation : payer la marge de sécurité
Lorsqu'un résultat arrive des heures après la fabrication du produit, la seule façon d'être sûr qu'un lot sera conforme est de viser nettement à l'intérieur de la limite. Hunter et Kartha ont établi la statistique pour les lignes de remplissage : une cible de procédé est fixée à une certaine distance de sa limite de spécification, du côté sûr, et plus elle en est éloignée, moins d'unités sont rejetées, mais un coût de surremplissage antagoniste limite la distance à laquelle la cible peut être déplacée de manière rentable, l'optimum dépendant de la variabilité du procédé [9]. Réduisez la variabilité, ou mesurez-la plus tôt, et la cible peut se rapprocher de la limite.
La même logique s'applique à la composition : un aliment formulé sur un minimum de protéine, une farine sur un maximum d'humidité ou une poudre laitière sur une spécification de matière grasse est « rempli » d'une marge de protéine, d'énergie de séchage ou de matière grasse, exactement comme une boîte est remplie d'une marge de produit. L'exemple réglementaire est le système européen du remplissage moyen : la directive 76/211/CEE exige que le contenu effectif d'un lot ne soit pas, en moyenne, inférieur à la quantité nominale, et que la proportion d'emballages dépassant une erreur en moins tolérée soit assez faible pour satisfaire aux contrôles de l'annexe II [10]. Un producteur qui ne peut pas voir à temps la distribution du lot achète sa conformité par le surremplissage.
Ce que l'analyse de procédé change, et ce qu'elle ne change pas
La spectroscopie proche infrarouge est le choix habituel pour la mesure de composition on-line et in-line dans l'agroalimentaire, car elle ne nécessite aucune préparation d'échantillon, peut être montée sur la ligne de production, mesure plusieurs constituants à la fois et assure une surveillance continue plutôt qu'à intervalles d'échantillonnage [11]. Porep, Kammerer et Carle décrivent les méthodes traditionnelles comme exigeantes en main-d'œuvre, longues et coûteuses et la NIR comme une alternative à faible coût de fonctionnement, mais signalent que de nombreuses études revendiquant une application en ligne relevaient en réalité du travail de laboratoire [12]. Pour l'aliment composé, Pérez-Marín et al. ont développé des étalonnages sur échantillons non broyés qu'ils ont jugés suffisamment fiables pour le contrôle qualité à l'usine d'aliments, avec un R² de 0,97 et une SECV de 5,5 g/kg pour la protéine brute [13].
Rien de tout cela ne supprime le laboratoire : un étalonnage NIR est construit à partir des méthodes de référence et validé par rapport à elles, si bien que les résultats Kjeldahl et d'extraction restent l'ancrage [3][5][13]. Ce qui change, c'est l'endroit où le coût est payé :
- Mesurez là où la décision est prise. Un analyseur at-line répond à une question de libération de lot, un analyseur in-line à une question de pilotage [1] ; choisissez l'emplacement en fonction de la décision, non de l'instrument.
- Considérez l'interface d'échantillonnage comme faisant partie de la méthode. Une sonde in-line voit un petit volume d'un flux en mouvement ; la théorie de l'échantillonnage s'y applique autant qu'à une écope, si bien que l'emplacement de la sonde et le temps de moyennage doivent être validés par rapport à des échantillons de référence représentatifs [7][8].
- Ne redéfinissez la cible qu'une fois la variance connue. Rapprocher une cible de formulation de sa limite se justifie par la distribution mesurée du procédé [9], non par la présence d'un instrument plus rapide.
L'approche d'USTECH
Les analyseurs USTECH couvrent ces emplacements : l'analyseur FT-NIR de procédé ProLine2550 pour la mesure in-line dans les mélangeurs, réacteurs et canalisations transportant des liquides, des suspensions et des flux de solides simples ; les analyseurs NIR in-line robustes ProLine17EC et ProLine17ECS pour les flux de solides ; et l'analyseur NIR at-line MasterLine17EC pour les grains, les matières premières d'aliments et les fourrages. Les étalonnages sont développés dans caliX par rapport aux méthodes de référence, et ProChem relie les analyseurs au PLC/SCADA afin qu'un résultat puisse alimenter la régulation des consignes. Les coûts qu'une usine paie réellement, et la part qu'une étape in-line ou at-line permet d'en récupérer, sont déterminés lors d'une étude de faisabilité menée avec vos propres échantillons et analyses de référence.
Références
- [1] U.S. Food and Drug Administration (2004). Guidance for Industry: PAT — A Framework for Innovative Pharmaceutical Development, Manufacturing, and Quality Assurance. FDA, Rockville, MD. fda.gov/regulatory-information/search-fda-guidance-documents/pat-framework-innovative-pharmaceutical-development-manufacturing-and-quality-assurance
- [2] International Council for Harmonisation (2009). ICH Harmonised Tripartite Guideline Q8(R2): Pharmaceutical Development. Step 4, August 2009. database.ich.org/sites/default/files/Q8(R2) Guideline.pdf
- [3] ISO 5983-1:2005. Animal feeding stuffs — Determination of nitrogen content and calculation of crude protein content — Part 1: Kjeldahl method. ISO, Geneva. iso.org/standard/39145.html
- [4] Thiex, N.J., Manson, H., Anderson, S., Persson, J.-Å. (2002). Determination of crude protein in animal feed, forage, grain, and oilseeds by using block digestion with a copper catalyst and steam distillation into boric acid: collaborative study. Journal of AOAC International, 85(2), 309–317. doi:10.1093/jaoac/85.2.309
- [5] ISO 6492:1999. Animal feeding stuffs — Determination of fat content. ISO, Geneva. iso.org/standard/12865.html
- [6] Gy, P. (2004). Sampling of discrete materials — a new introduction to the theory of sampling: I. Qualitative approach. Chemometrics and Intelligent Laboratory Systems, 74(1), 7–24. doi:10.1016/j.chemolab.2004.05.012
- [7] Petersen, L., Minkkinen, P., Esbensen, K.H. (2005). Representative sampling for reliable data analysis: Theory of Sampling. Chemometrics and Intelligent Laboratory Systems, 77(1–2), 261–277. doi:10.1016/j.chemolab.2004.09.013
- [8] Esbensen, K.H., Paasch-Mortensen, P. (2010). Process sampling: Theory of Sampling – the missing link in process analytical technologies (PAT). In: Bakeev, K.A. (ed.), Process Analytical Technology: Spectroscopic Tools and Implementation Strategies for the Chemical and Pharmaceutical Industries, 2nd ed., Wiley, Chichester, pp. 37–80. doi:10.1002/9780470689592.ch3
- [9] Hunter, W.G., Kartha, C.P. (1977). Determining the most profitable target value for a production process. Journal of Quality Technology, 9(4), 176–181. doi:10.1080/00224065.1977.11980794
- [10] Council Directive 76/211/EEC of 20 January 1976 on the approximation of the laws of the Member States relating to the making-up by weight or by volume of certain prepackaged products, Annex I. Official Journal of the European Communities, L 46, 21.2.1976 (as amended). eur-lex.europa.eu/eli/dir/1976/211/oj
- [11] Huang, H., Yu, H., Xu, H., Ying, Y. (2008). Near infrared spectroscopy for on/in-line monitoring of quality in foods and beverages: A review. Journal of Food Engineering, 87(3), 303–313. doi:10.1016/j.jfoodeng.2007.12.022
- [12] Porep, J.U., Kammerer, D.R., Carle, R. (2015). On-line application of near infrared (NIR) spectroscopy in food production. Trends in Food Science & Technology, 46(2), 211–230. doi:10.1016/j.tifs.2015.10.002
- [13] Pérez-Marín, D.C., Garrido-Varo, A., Guerrero-Ginel, J.E., Gómez-Cabrera, A. (2004). Near-infrared reflectance spectroscopy (NIRS) for the mandatory labelling of compound feedingstuffs: chemical composition and open-declaration. Animal Feed Science and Technology, 116(3–4), 333–349. doi:10.1016/j.anifeedsci.2004.05.002